Microscopía óptica avanzada
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Microscopía de fluorescencia y luz transmitida de campo ancho.
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Microscopía laser confocal.
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Microscopía de excitación con dos fotones (Multifotón).
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Generación de Segundo Armónico (SHG y Polarization SHG).
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Procesado y análisis de imágenes.
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Bioluminiscencia no invasiva en animal vivo.
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Cultivos y micromanipulaciónes celulares.
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Inclusión en parafina.
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Corte de tejido con micrótomo.
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Corte de tejido con criostato.
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Imágenes de fluorescencia y luz transmitida, multicanal, multidimensional (xyztc).
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Imágenes multiposición y mosaico.
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Microscopía de célula viva, cursos temporales.
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Análisis de proximidad molecular: Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET).
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Análisis de dinámica molecular: Fluorescence Recovery After Photobleaching (FRAP), Inverse FRAP, Fluorescence loss in photobleaching (FLIP) y fotomarcaje.
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Microscopía intravital con animal vivo (multifotón de alta velocidad).
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Microscopía con luz cercana a infrarojo: multifotón y generación de segundo harmónico.
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Mantenimiento de lineas celulares para experimentos de microscopía.
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Micromanipulación celular: microinyección.
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Inmunocitoquímica: Marcajes celulares y moleculares (transfecciones, tinciones).
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Inmunohistoquímica: Procesado y marcaje de tejidos congelados (cortes con criostato, tinciones).
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Análisis de imágenes:
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Procesado (filtrado, reconstrucciones 3D, montaje vídeos) y análisis de imágenes (colocalización, dinámica molecular, análisis de partículas y superficies).
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Desarrollo de macros de instrucciones.
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Assessoría en el diseño, preparación, realización y análisis de experimentos de técnicas de microscopía óptica.
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Cursos teorico-prácticos
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Cuantificación de partículas (ex: contaje bacteriológico de aguas).
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Imagen molecular para el estudio de procesos celulares y moleculares in vivo.
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Funcionalidad de biosensores y drug delivery systems en cultivos celulares.
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Ensayos de citotoxicidad y viabilidad celular.
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Ensayos de migración celular en cultivos 2D y 3D.
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Cuantificación de contacto hueso-implante (BIC) en dientes.
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Análisis morfométricos.
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Localización subcelular y cinética de fármacos fluorescentes.
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Análisis del crecimiento de neuritas.
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Análisis de colocación de dos o más moléculas.
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Estudios de viabilidad celular con diferentes marcadores.
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Inmunohistoquímica, inmunocitoquímica, tinciones, marcadores vitales y proteínas fluorescentes.
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Estudios de dinámicas de endocitosis celular in vivo.
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Caracterización y localización subcelular de diferentes epítopos.
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Investigación aplicada con muestras humanas y diferentes modelos experimentales animales (rata, ratón, C. Elegans, Xenopus Tropicalis…).
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“Cell/particle tracking” In vivo.
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Perfilometría confocal.
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Apellidos
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Nombre
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Ubicación
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Teléfono
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Email
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BARROSO INDIANO
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BEATRIZ
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Bellvitge C/ Feixa Llarga s/n
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934034863
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bbarroso@ccit.ub.edu
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BOSCH MARIMON (*)
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MANEL
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Fac. Biologia. Av. Diagonal, 645
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934020176
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mbosch@ccit.ub.edu
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CALVO ADAMUZ (*)
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MARIA
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Fac. Medicina C/ Casanova, 143
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934037159/
9340934039930
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mcalvo@ccit.ub.edu
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CASTAÑO BOLDU (*)
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ESTHER
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Bellvitge C/ Feixa Llarga s/n
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934034863
|
ecastano@ccit.ub.edu
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| MARTÍN MALPARTIDA |
GEMMA |
Fac. Medicina C/ Casanova, 143 |
934037159 |
gemmamartin@ccit.ub.edu |
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TORREJON ESCRIBANO
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BENJAMIN
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Bellvitge C/ Feixa Llarga s/n
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934034863
|
torrejonbenja@ccit.ub.edu
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| UNZUETA PAYERAS |
FERNANDO |
Fac. Medicina C/ Casanova, 143 |
934037159 |
funzueta@ccit.ub.edu |
(*) para más información
Formulario Pre-booking (Bellvitge) 
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