Microscopía óptica avanzada

	Microscopía de fluorescencia y luz transmitida de campo ancho.
	Microscopía laser confocal.
	Microscopía de excitación con dos fotones (Multifotón).
	Generación de Segundo Armónico (SHG y Polarization SHG).
	Procesado y análisis de imágenes.
	Bioluminiscencia no invasiva en animal vivo.
	Cultivos y micromanipulaciónes celulares.
	Inclusión en parafina.
	Corte de tejido con micrótomo.
	Corte de tejido con criostato.

	Imágenes de fluorescencia y luz transmitida, multicanal, multidimensional (xyztc).
	Imágenes multiposición y mosaico.
	Microscopía de célula viva, cursos temporales.
	Análisis de proximidad molecular: Fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET).
	Análisis de dinámica molecular: Fluorescence Recovery After Photobleaching (FRAP), Inverse FRAP, Fluorescence loss in photobleaching (FLIP) y fotomarcaje.
	Microscopía intravital con animal vivo (multifotón de alta velocidad).
	Microscopía con luz cercana a infrarojo: multifotón y generación de segundo harmónico.
	Mantenimiento de lineas celulares para experimentos de microscopía.
	Micromanipulación celular: microinyección.
	Inmunocitoquímica: Marcajes celulares y moleculares (transfecciones, tinciones).
	Inmunohistoquímica: Procesado y marcaje de tejidos congelados (cortes con criostato, tinciones).
	Análisis de imágenes:
		Procesado (filtrado, reconstrucciones 3D, montaje vídeos) y análisis de imágenes (colocalización, dinámica molecular, análisis de partículas y superficies).
		Desarrollo de macros de instrucciones.
	Assessoría en el diseño, preparación, realización y análisis de experimentos de técnicas de microscopía óptica.
	Cursos teorico-prácticos

	Cuantificación de partículas (ex: contaje bacteriológico de aguas).
	Imagen molecular para el estudio de procesos celulares y moleculares in vivo.
	Funcionalidad de biosensores y drug delivery systems en cultivos celulares.
	Ensayos de citotoxicidad y viabilidad celular.
	Ensayos de migración celular en cultivos 2D y 3D.
	Cuantificación de contacto hueso-implante (BIC) en dientes.
	Análisis morfométricos.
	Localización subcelular y cinética de fármacos fluorescentes.
	Análisis del crecimiento de neuritas.
	Análisis de colocación de dos o más moléculas.
	Estudios de viabilidad celular con diferentes marcadores.
	Inmunohistoquímica, inmunocitoquímica, tinciones, marcadores vitales y proteínas fluorescentes.
	Estudios de dinámicas de endocitosis celular in vivo.
	Caracterización y localización subcelular de diferentes epítopos.
	Investigación aplicada con muestras humanas y diferentes modelos experimentales animales (rata, ratón, C. Elegans, Xenopus Tropicalis…).
	“Cell/particle tracking” In vivo.
	Perfilometría confocal.

Apellidos	Nombre	Ubicación	Teléfono	Email
BARROSO INDIANO	BEATRIZ	Bellvitge C/ Feixa Llarga s/n	934034863	bbarroso@ccit.ub.edu
BOSCH MARIMON (*)	MANEL	Fac. Biologia. Av. Diagonal, 645	934020176	mbosch@ccit.ub.edu
CALVO ADAMUZ (*)	MARIA	Fac. Medicina C/ Casanova, 143	934037159/ 9340934039930	mcalvo@ccit.ub.edu
CASTAÑO BOLDU (*)	ESTHER	Bellvitge C/ Feixa Llarga s/n	934034863	ecastano@ccit.ub.edu
MARTÍN MALPARTIDA	GEMMA	Fac. Medicina C/ Casanova, 143	934037159	gemmamartin@ccit.ub.edu
TORREJON ESCRIBANO	BENJAMIN	Bellvitge C/ Feixa Llarga s/n	934034863	torrejonbenja@ccit.ub.edu
UNZUETA PAYERAS	FERNANDO	Fac. Medicina C/ Casanova, 143	934037159	funzueta@ccit.ub.edu

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