Microscopía óptica avanzada

• Microscopía de fluorescencia y luz transmitida de campo ancho.
• Microscopía laser confocal.
• Microscopía de excitación con dos fotones (Multifotón).
• Generación de Segundo Armónico (SHG y Polarization SHG).
• Procesado y análisis de imágenes.
• Bioluminiscencia no invasiva en animal vivo.
• Cultivos y micromanipulaciónes celulares.
• Inclusión en parafina.
• Corte de tejido con micrótomo.
• Corte de tejido con criostato.

• Imágenes de fluorescencia y luz transmitida, multicanal, multidimensional (xyztc).
• Imágenes multiposición y mosaico.
• Microscopía de célula viva, cursos temporales.
• Análisis de proximidad molecular: fluorescence Resonance Energy Transfer (FRET).
• Análisis de dinámica molecular: fluorescence Recovery After Photobleaching (FRAP), Inverse FRAP, Fluorescence loss in photobleaching (FLIP) y fotomarcaje.
• Microscopía intravital con animal vivo (multifotón de alta velocidad).
• Microscopía con luz cercana a infrarojo: multifotón y generación de segundo harmónico.
• Mantenimiento de lineas celulares para experimentos de microscopía.
• Micromanipulación celular: microinyección.
• Inmunocitoquímica: marcajes celulares y moleculares (transfecciones, tinciones).
• Inmunohistoquímica: procesado y marcaje de tejidos congelados (cortes con criostato, tinciones).
• Análisis de imágenes:
• Procesado (filtrado, reconstrucciones 3D, montaje vídeos) y análisis de imágenes (colocalización, dinámica molecular, análisis de partículas y superficies).
• Desarrollo de macros de instrucciones.
• Assessoría en el diseño, preparación, realización y análisis de experimentos de técnicas de microscopía óptica.
• Cursos teorico-prácticos

• Cuantificación de partículas (ex: contaje bacteriológico de aguas).
• Imagen molecular para el estudio de procesos celulares y moleculares in vivo.
• Funcionalidad de biosensores y drug delivery systems en cultivos celulares.
• Ensayos de citotoxicidad y viabilidad celular.
• Ensayos de migración celular en cultivos 2D y 3D.
• Cuantificación de contacto hueso-implante (BIC) en dientes.
• Análisis morfométricos.
• Localización subcelular y cinética de fármacos fluorescentes.
• Análisis del crecimiento de neuritas.
• Análisis de colocación de dos o más moléculas.
• Estudios de viabilidad celular con diferentes marcadores.
• Inmunohistoquímica, inmunocitoquímica, tinciones, marcadores vitales y proteínas fluorescentes.
• Estudios de dinámicas de endocitosis celular in vivo.
• Caracterización y localización subcelular de diferentes epítopos.
• Investigación aplicada con muestras humanas y diferentes modelos experimentales animales (rata, ratón, C. Elegans, Xenopus Tropicalis…).
• "Cell/particle tracking” In vivo.
• Perfilometría confocal.

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